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1、技術原理 
植物基因轉化技術可分為兩大類:一類是直接基因轉移技術,包括基因槍法、原生質體法、脂質體法、花粉管通道法、電激轉化法、PEG介導轉化方法等,其中基因槍轉化法是代表。

另一類是生物介導的轉化方法,主要有農(nóng)桿菌介導和病毒介導兩種轉化方法,其中農(nóng)桿菌介導的轉化方法廣泛應用于雙子葉植物的遺傳轉化。

基因轉化-OE原理是將重組質粒轉化到農(nóng)桿菌感受態(tài)細胞中后,用含有重組質粒的農(nóng)桿菌去侵染植物葉子切口,目的基因插入到經(jīng)過改造的T-DNA區(qū),借助農(nóng)桿菌的感染實現(xiàn)外源基因向植物細胞的轉移和整合,然后通過組織培養(yǎng)技術,得到轉基因植物。當構建的表達載體含有高活性組成型啟動子時,目的基因就會被高活性啟動子啟動在細胞內過量表達,這就是基因轉化過量表達。
基因轉化-RNAi原理是在質?;虿《据d體中,利用RNA聚合酶啟動因子U6或T7分別控制正義鏈和反義鏈的合成并退火形成雙鏈siRNA,或在啟動子下游設計帶發(fā)夾結構的表達單位,自身退火形成雙鏈siRNA。將重組質粒轉化到農(nóng)桿菌感受態(tài)細胞中后,用含有重組質粒的農(nóng)桿菌去侵染植物葉子切口,細胞中與目標基因序列同源的雙鏈小RNA可以高效、特異性地阻斷目標基因表達,促使mRNA降解,誘使細胞表現(xiàn)出目標基因缺失的表型。在植物體中,RNAi被稱為基因共抑制,也是一種體內抵御外在感染的重要保護機制。
2、技術優(yōu)勢
1)模仿或利用天然的轉化載體系統(tǒng),成功率高,效果好;
2)農(nóng)桿菌介導的轉化系統(tǒng)的機理研究得最清楚,方法最成熟,應用也最廣泛;
3)農(nóng)桿菌介導的轉化系統(tǒng)轉化的外源基因以單拷貝為多數(shù),遺傳穩(wěn)定性好,并且多數(shù)符合孟德爾遺傳規(guī)律,因此轉基因植株能較好地為育種提供了中間選育材料;
4)農(nóng)桿菌介導的轉化系統(tǒng)操作比較容易,需要的儀器設備簡單,成本低,易于推廣。
3、應用領域
1)生產(chǎn)重組疫苗、抑生長素、胰島素、干擾素、人生長激素等;
2)培育了一批具有抗蟲、抗病、抗旱耐鹽、耐除草劑等性狀的轉基因作物;
3)改善作物農(nóng)藝性狀如光合效率、肥料利用效率和改善品質等。
4、技術路線及時間周期

5、實施方案
1、目的基因克隆
1)引物設計:
基因轉化-OE:我們建議客戶提供目的基因的編碼序列(Coding sequence, CDS),根據(jù)CDS序列設計可擴增完整CDS序列(無終止子)的特異性引物。因為不是所有讀碼框(ORF)都能被表達出蛋白產(chǎn)物,或者能產(chǎn)生生物學功能的蛋白。
基因轉化-RNAi:我們建議客戶一般采用200-300 bp片段插入沉默載體中,實驗采用pHellsgate8 載體。pHellsgate8 RNAi載體構建方法采用BP重組反應。根據(jù)目的基因序列與其他物種基因序列進行比對,設計RNAi載體引物A-RNAi-attB-F(含attB位點)和A-RNAi-attB-R(含attB位點)。
2)若客戶提供已測序驗證的含有目的基因的T載體,則直接進行第5)步;若客戶只提供植物材料,則進行第3)步。
3)使用本公司專門針對物種特性開發(fā)的RNA提取試劑盒進行提取樣品總RNA提取。
4)反轉錄獲得第一鏈cDNA。
5)以cDNA或含有目的基因的T載體為模板,使用特異性引物進行PCR擴增。
6)PCR產(chǎn)物進行1%瓊脂糖凝膠電泳,并切膠回收。
7)使用DNA拓撲異構酶(DNA Topoisomerase)進行TA連接,轉化感受態(tài)細胞后對陽性克隆進行菌落PCR鑒定,鑒定為陽性的再測序驗證。
8)經(jīng)過驗證的TA質粒置于-80℃保存。
2、構建過表達載體
本公司使用ClonExpress?技術,無須中間載體,一步將目的片段定向克隆進入植物過表達載體中。詳細操作請見“載體構建”??筛鶕?jù)客戶需求使用不同抗性(卡那霉素、潮霉素、慶大霉素、除草劑)的植物表達載體。
3、凍融法轉化農(nóng)桿菌
用凍融法將過表達載體和RNAi載體轉化到農(nóng)桿菌菌株(GV3101、LBA4404、EHA105可選)中,具體操作如下:
1)吸取5-10 μl質粒DNA加入100 μl融化后感受態(tài)細胞,上下吹吸均勻,冰上放置30 min。
2)將混合液放入液氮中1 min。
3)將混合液取出,轉入37℃水浴5 min融化后,加入650 μl新鮮LB液體培養(yǎng)基,28℃,150 rpm/min低速振蕩3 h左右。
4)8,000 rpm離心30 sec,去上清,加100 μl液體培養(yǎng)基,懸浮菌體后涂于含抗生素和利福平的LB固體培養(yǎng)基中。
5)獲得的轉化菌株用于農(nóng)桿菌侵染。
4、組培無菌苗,制備外植體
1)用75%的乙醇和20%次氯酸鈉溶液分別依次漂洗種子10 min,再用無菌水漂洗3次,每次3 min,然后放在1/2MS培養(yǎng)基上進行培養(yǎng),當煙苗長到四片葉左右時,取嫩葉進行分化。
2)將新鮮的無菌煙草葉片剪成1 cm見方的小塊,接種于不含任何抗生素的煙草分化培養(yǎng)基上預培養(yǎng)2 d。煙草分化培養(yǎng)基為MS+2.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA, 蔗糖 30 g/L, 瓊脂6 g/L, ph=5.8;
5、農(nóng)桿菌侵染,誘導出芽
1)在取煙草外植體的同時將含有過表達質粒的農(nóng)桿菌接種于含適當濃度的抗生素和利福平的YEB培養(yǎng)基中,28℃,250 rpm/min,振蕩培養(yǎng)過夜;
2)將飽和的農(nóng)桿菌菌液按1:100的比例注入到不含任何抗生素的YEB培養(yǎng)基中,28°C,250 rpm/min,振蕩培養(yǎng)至OD600=0.5左右;
3)將預培養(yǎng)兩天的煙草外植體浸到活化好的農(nóng)桿菌菌液中10 min;
4)用濾紙將外植體上的殘余菌液吸干,之后接種于不含任何抗生素的分化培養(yǎng)基上,暗培養(yǎng)兩天;
5)將暗培養(yǎng)過的外植體轉入篩選培養(yǎng)基上,每10 d繼代一次。
6)再生苗長到1-2CM時切下,轉入伸長培養(yǎng)基中瓶中培養(yǎng)。
6、抗性T0代植株再生
將分化出的不定芽移入生根培養(yǎng)基中生根,生根培養(yǎng)基為MS+0.2 mg/L NAA+ PPT 4 mg/L + Timentin 160 mg。
7、PCR檢測陽性植株
待試管苗長到3-4片時,揭開封口膜,取少量葉子提取DNA,根據(jù)載體特有序列設計引物進行PCR擴增檢測。
8、煉苗移栽(可選)
PCR檢測為陽性的植株,在光照培養(yǎng)室中煉苗3-4 d,然后移栽到培養(yǎng)缽中。
9、收獲T1代種子(可選)
    加快生長周期,單株套袋,收獲種子。
6、服務內容    周期    驗收標準
目的基因克隆    3個工作日    PCR電泳圖、測序報告
植物表達載體構建    10個工作日    PCR/酶切電泳圖、測序報告
煙草遺傳轉化    約2個月    植株DNA PCR擴增目的基因電泳圖特異條帶
煉苗移栽(可選)    15個工作日    -
收獲T1代種子(可選)    加速生長周期    -
目的基因轉錄qRT-PCR檢測(可選)    10個工作日    目的基因轉錄數(shù)據(jù)
目的基因Southern blot(可選)    20個工作日    雜交電泳圖
目的基因蛋白Western blot(可選)    20個工作日    雜交電泳圖